如何将酶切后的pcr产物和质粒连接起来

第一个办法,如果你有这个载体的通用引物,可以用这俩通用引物做PCR,然后电泳观察条带的大小,如果条带和你的mRNA的大小相近（应该是略大于mRNA的,因为带有了小部分的载体序列）,那就说明这里边是插入

有2个目的,一是验证插入序列的DNA序列是否无误.第二是看插入的方向和位置是否正确.如果做定量PCR用到质粒的话,一般是用来做标准曲线的.

在PCR的优化开始阶段,应用新的DNA模板,引物或热稳定DNA聚合酶等材料建立的PCR方法,其扩增效果一般总不是最佳的.这种PCR反应通常要求尽量抑制非特异性扩增和（或）增加目的DNA产物的产率.表1

使用标准浓度内参.

不管酶切还是PCR,都是间接的结果.要确定克隆的正确,一定要测序的啊.你测个序,问题就迎刃而解了.到底是什么问题也就清楚了.再问：我前些天去遇到一样的问题，酶切鉴定正确，但测序后什么也不是呢再答：所以

分子水平上,用人工的方法提取（或者合成）不同的生物的遗传物质,在体外切割拼接和重新组合,然后通过不同方法把重组的DNA分子引入受体细胞,使外源DNA在受体细胞进行复制与表达,按人的需要生产不同的产物或

能说一下你这样酶切的目的么?40bp和36bp的条带,只相差4个bp,基本上在琼脂糖胶上就不用考虑分清楚了.最好使用聚丙烯酰胺凝胶,很多用变性聚丙烯酰胺凝胶,可以分离到碱基数相差很少的条带,而某些变性

原理：是来至于双脱氧链终止法——现在应用最多的核酸测序技术,由Sanger等1977年提出：模板经过测序PCR反应后形成3'末端带有荧光标记（早期用同位素标记）的相差一个碱基的不同长度的产物,再根据每

我也不是什么专家,只是做论文的时候研究过一段时间.我不太明白你的问题,不是cDNA,怎么能用RACE呢,RACE不是cDNA末端快速扩增技术(rapidamplificationofcDNAends,

你要重新设计引物了有引物2具体有好几个峰,谁也不知道是哪个,是产物的话主要看溶解温度,溶解温度高一般是产物.建议重新设计引物,重做梯度PRC电泳分析.再问：懒得做电泳了，引物是没有问题的，因为是参考文

重组体

3.028×1011（10的11次方）就是3.028E11E就是10的几次方的意思.

首先要看你的条带是否清晰,虽然亮度不够但是清晰度应该高,没有拖尾没有非特异条带和引物二聚体,如果以上都没有,仅仅是目标条带不够亮的话,我觉得你可以将25微升体积同比放大至50微升反应体系,相应的制胶的

如果你切的是PCR产物的两端,那么跑胶是看不出来区别的.选择这样只是因为方便,酶切的效率要取决于保护碱基、酶的质量等等,一般根据经验切完之后,挖胶回收,如果产物带很特异的话,直接PCR产物回收也可以（

楼上说的是一方面.PCR产物测序也是可以的,可以送粗样,也就是不纯化的,也可以送纯化好的.但很多公司测的不是很好,所以一般建议转到克隆载体中保存了送菌液或质粒测序.PCR产物纯化是去除多余的dNTP和

不需要加质粒啊模板就是cDNA再问：我是用PCR产物回收纯化后T载体连接~转化大肠杆菌~提取的质粒做实时荧光定量PCR~为什么老师还说要进入反转录后的cDNA再答：你这个实验要干嘛哪有用T载体转化提质

跑胶看大小啊,如果是转到了细菌中,就用目的基因的引物做PCR,能P出来的就是

要是实际应用的话,你做个链接试试就知道了呗或者电泳的时候点一个没切过的做下对照,迁移率会有差别

完全确保的话,第一,做酶切的两个酶要不一样；二你在做完酶切后,用磷酸化酶处理下,纯化后再连接（这一不会降低连接效率,但会确保质粒不自连.按正确方向克隆

可分为长产物片段和短产物片段两部分.短产物片段的长度严格地限定在两个引物链5'端之间,是需要扩增的特定片段.短产物片段和长产物片段是由于引物所结合的模板不一样而形成的,以一个原始模板为例,在第一个反应